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作者 kshsdeck 在 PTT [ Biotech ] 看板的留言(推文), 共39則
限定看板:Biotech
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9F→:真的表現不出來的話 只能換vector 試試pET系列的tags02/11 17:23
2F推:冒到外面你那槽基本上就不是sterile了12/20 04:23
3F→:同上 加消泡劑 可以跟Sigma買 關鍵字:Antifoam Y-3012/20 04:26
4F→:binding buffer可以加10mM Imidazole05/31 22:14
5F→:主要是靠wash這個步驟05/31 22:16
6F→:wash buffer的Imidazole濃度05/31 22:16
7F→:要看目標蛋白和雜蛋白與resin結合能力的差距05/31 22:16
8F→:拉個gradient或是階層式的提高imidazole的濃度05/31 22:18
9F→:看你目標蛋白和主要雜蛋白peak出來時,Imidazole的濃度05/31 22:18
10F→:運氣好你要的蛋白結合力強,wash buffer濃度就可以提高05/31 22:20
11F→:就可以盡量洗掉雜蛋白05/31 22:23
12F→:一般來說,只用一根Ni-column,不容易拿到很pure的蛋白05/31 22:25
13F→:purity和yeild兩者要取平衡點05/31 22:26
32F推:各種細胞用的medium濃度是固定的,提高濃度會改變滲透壓05/25 15:47
33F→:只放薄薄的一層 要考慮到蒸發的問題 對濃度影響較大05/25 15:50
34F→:一般在dish或flask裡養的細胞 即使長滿養分都夠放好幾天05/25 15:52
35F→:但要考慮細胞產生的代謝物和pH的下降05/25 15:53
36F推:以上就是為什麼大家都行之有年的用8-10ml去養10cm dish05/25 15:59
37F→:而不做一些奇奇怪怪的改變05/25 16:00
6F推:sonication效果有限 尤其是放大規模後05/17 23:31
7F→:eppendorf打的破 同樣條件在離心管不一定破的完全05/17 23:32
8F→:french press效果會好很多05/17 23:33
9F→:在小量的時候,就應該先拿去sonicate,確定蛋白可不可溶05/17 23:35
10F→:小量induction確定蛋白可溶,再考慮是不是破菌方法不夠好05/17 23:37
11F推:小量確定不溶的話,調整IPTG濃度,溫度,induction時O.D60005/17 23:41
12F→:再不行就換vector和Host05/17 23:41
13F推:補充一點 如果是破菌的問題,又沒有辦法借到French press05/17 23:44
14F→:可以先Freeze&Thaw幾次,或是加Lysozyme05/17 23:45
15F→:這樣前處理完,就已經可以看到稠稠的DNA跑出來了05/17 23:47
11F推:之前滅過500g/1L 拿來餵E.coli用 這種濃度不會焦11/02 19:10
1F推:蛋白表現的很多可能性都要試了才知道,蠻碰運氣的04/22 18:49
9F推:sonicate完 40000g一小時 上清液就是可溶性蛋白 不用煮02/27 22:52
10F推:NaN3放在抗體溶液中是為了保存防腐用,看目的,也有人不加02/27 23:05
13F推:transfer過頭 電流調小或時間縮短02/18 21:38
5F推:有些抗體不適合應用在某些樣品中07/21 22:56