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作者 musicman 在 PTT [ Biotech ] 看板的留言(推文), 共86則
限定看板:Biotech
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8F→:1ul plasmid + 9ul QH2O --->RE digestion--->跑膠09/15 18:13
6F推:自己再用樣的濃度製備一張,隔天自己transform一次看看囉06/08 19:52
7F→:如果你做的出來,就代表是對方的問題 (菌種,回溶...)06/08 19:52
23F推:EcoRI切個1.5hr以上吧 不會亂切啦, 大概load 2ug下去切05/06 23:06
2F推:你的insert都好長啊......其實光看這樣的內容 不太能幫你04/28 14:18
3F→:建議什麼,少了很多資訊,許多實驗條件都沒講(不方便透漏則04/28 14:19
4F→:另當別論) 希望可以多一點有用的資訊 好讓大家集思廣益04/28 14:19
8F推:如 insert : vector 的比例,反應溫度時間 等等..04/28 14:40
12F推:blunt end ligation 本身就比較困難 試試看 5:5:1 記得要04/28 14:56
13F→:做 control組04/28 14:56
14F→:第二組 可能兩個vector自接的狀況會很嚴重,至少挑一個04/28 14:58
15F→:vector做一下CIP或SAP, 比例不要用1:104/28 15:00
16F→:第一組的 insert真的頗大,7k....有辦法拆成兩段嗎?04/28 15:02
18F→:抱歉,看錯~1.7K應該還好...04/28 15:07
4F推:其實應該換一隻手 做看看XDDD04/28 12:01
2F推:vector digestion 結束後,先過個column,把digestion的04/27 19:35
3F→:酵素跟buffer 清除一下,再去做CIP ,但這邊依然要懷疑做04/27 19:37
4F→:CIP的必要性,請問您CIP的條件? 可以的話 做一組沒有CIP04/27 19:37
5F→:的ligation看看~說不定有意想不到的收穫04/27 19:38
6F→:insert的部分 可以先做TA clone 再送定序看看 正確性04/27 19:39
2F推:Insert:Vector 改成 4:1~5:1 另外,ligation的反應條件04/27 17:19
3F→:總反應體積改成 20ul, 在22度c反應2~3hr(NEB ligase) ,04/27 17:21
4F→:vector 的 CIP 則不一定要做,取10ul去做transformation04/27 17:23
5F→: 如果有跑膠的圖可以看 比較好判斷~04/27 17:28
12F→:同 yap ,要做一組 vector only的control~04/27 18:34
6F→:唉~就是哪個CONTROL漂亮就放哪個啦~~04/25 07:36
7F推:我自己經驗是兩端切位為同一酵素就做CIP04/19 23:15
8F→:如果我是原PO, EcoRI跟BamHI 我就直接ligation了04/19 23:16
6F推:transwell (matrigel assay) =invision+migration 能力02/17 22:35
7F→:wound healing assay = migration only02/17 22:36