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作者 windyflyer 在 PTT [ Biotech ] 看板的留言(推文), 共78則
限定看板:Biotech
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19F推: 我自己的經驗 THP-1喜歡又酸又擠的環境 所以請1/2分10/08 15:51
20F→: 讓他長年處在擁擠的flask中 他就會長的又圓又飄XD10/08 15:51
7F→: 有 但沒看到任何shift@@"03/23 18:56
8F→: 已經貼細胞下去要收RNA了 不過對於沒螢光/沒protein03/23 18:56
9F→: 這件事感到疑惑QAQ03/23 18:57
18F→: 我重新clone一次之後有壓出來了~位置都對T_T06/22 21:44
5F推: 這樣方法拿到的primer的確有機率會怪怪的07/30 22:45
6F→: 我們家之前也用過一陣子 但實在不穩定所以後來還是換07/30 22:45
7F→: 訂來是粉狀的07/30 22:45
6F推: 呃 題外話是真的假的 為啥我一點感覺都沒有XD07/30 23:11
13F推: 我...我當初是從中間剛好有酵素切位分兩半再接起來07/30 23:20
14F→: 然後才發現後面沒問題 問題出在前半 最後前半用合成07/30 23:21
4F→:我們一直是在hood倒盤的~09/24 19:46
11F→:因為一開始用1.5%粉末混濁狀況會更嚴重 加上版上有查到09/25 10:27
12F→:1%才改的 以前也是用1.5%+109/25 10:27
13F→:其實自配之前也用過也沒問題 是換了agar之後開始的09/25 10:27
14F→:詭異的點在於連換兩家都一樣...09/25 10:28
15F→:直接拿去煮ok 可是不知道為啥搭了LB就不行 這兩個分開09/25 10:28
16F→:都很好Orz09/25 10:28
17F→:我們之前一樣的配方做法都ok 是換了GM的agar開始變這樣09/25 10:29
18F→:壓力沒問題 因為拿去隔壁系的也是一樣狀況...09/25 10:30
19F→:調pH值唷..以前沒這樣做過._.可以講解一下嘛XD09/25 10:31
23F→:我有試過加熱板先煮 不過大概只有30min滾了我就拿去滅09/25 11:40
24F→:了 先溶LB再加agar我會試試看!09/25 11:40
28F→:喔忘記說 實驗室有人直接拿agar加水去煮是會溶的 不過09/25 13:06
29F→:那時候我人不在現場就是了..09/25 13:07
15F推:nano很強非常強 我們家測之前三小時換medium還會有幾百07/29 14:54
16F→:萬的讀值!不過有趣的是nano不能跟renilla一起表現 因為07/29 14:54
17F→:co-transfect的細胞刮下來測renilla會跟著飆上去..07/29 14:55
7F推:我也用過這組kit 提供我的方法給你參考~12/24 18:42
8F→:我前面步驟都照protocol 但是P完等確定冷卻後(通常都偷12/24 18:43
9F→:懶冰4度O/N)然後再加入DpnI反應 接著取10ul去transform12/24 18:43
10F→:我用他提供的competent cell很難長12/24 18:44
11F→:難長colony 這是我的方法啦@@"有點偏方XDD12/24 18:44
12F→:用他的competent cell很難長 所以我用我們家自己做的12/24 18:45
9F推:可以在此偷偷求transfer buffer(含methanol)配方嗎?12/24 18:56
10F→:我們家自從某一次搞丟以前的transfer buff配方用隔壁12/24 18:56
11F→:實驗室的之後 都有tran不乾淨的狀況 從35kDa就會殘留12/24 18:57
3F推:原來如此 還有-w-?09/26 11:16