Re: [求救] 請問RNA去除genomic DNA的方法
※ 引述《chiehdis (chiehhime)》之銘言:
: 或許你可以搜尋我ID(小寫a + chiehdis) 看一下是不是類似的問題
: 如果是的話 相關回文可以看一下 那篇作者很厲害 幫助我很多~~
: 另外 基於如何去除gDNA又保持RNA不被降解~提供給你一些我查到的方法:
: <<DNase>>
: 我們家本來用Ambion Turbo ~
: 方法是加入 enzyme 和 buffer 後 65度 incubate 30分鐘
: 再加入inactivation reagent 4度五分鐘後離心取上清液
: 但RNA濃度和品質受到不小影響~(我想可能是高溫的關係)
: (但也很可能是我自己操作的失誤
: 因為有強者同方法依舊得到超好看的電泳和數據~)
: 改良方法
: 1.Fermentase 37度 (較低溫) 10分鐘(縮短時間)
: 2.Roche 室溫(較低溫) 20分鐘(縮短時間)
: 缺點:但是以上兩者皆要過CI 步驟增加 回收量就會少~!!
: 3.Ambion 以resin當成inactivation reagent (避免化學或熱傷害RNA)
: http://www.ambion.com/techlib/tn/114/10.html 有原理和比較詳細的說明~
: 缺點:聽說奇貴無比!!!!
其實也沒有很貴XD
(我們是減量到一組可以用 120 rx'n,這樣一個反應在 30 元左右)
(這個版應該可以大約的說一下價錢吧?!)
他的 DNA 活性很好,而且 inactivation reagent 中加有防止 RNA 降解的物質,
所以效果就更好了。
: <<Kit>>
: 1.Qiagen 的 column
: 缺點: 較貴 且無法操作很大量~~(對我來說~因為我要的量很多!!!)
: <<直接在抽取過程中去除DNA>>
: 1.TRIzol v.s RNAzol
: 這是我打去詢問一個RNA乾燥產品時 sales提供我的~ (可以跟她拿個3ml的sample試用~)
: 和粉紅色的TRIzol不同 RNAzol是清澈的藍色液體
: 號稱是TRIzol系列第四代~~ 不用加CI 抽完RNA也不用去DNA
: 價錢是TRIzol的兩倍
: 但是依我用來抽取真菌的RNA看來 是沒有DNA汙染 但Nanodrop的值很差~
: 濃度 純度 260/230(我用來看多醣汙染) 都比TRIzol低
這玩意兒真的不大好用。
: 所以就被我丟到一邊了.......
: (聽說抽取另一種真菌和植物的quality也都不好...)
: 缺點:貴 效果又不佳
: 最後結果
不管是哪種抽取的方式,肯定會有 DNA contamination。
畢竟 RNA 跟 DNA 長得太像了,是絕對不可能完全分開的...
Qiagen 的 kit 有兩種,
一種是加 DNase 在 matrix 上處理(當然也可以 elute 後處理)
另一種是配有 gDNA elimination column。
聽說這玩意兒的效果相當好。
你也可以跟 Qiagen 買配合 TRIzol 使用的 kit,
也可以選購 gDNA elimination column。
這樣你就經過兩個步驟去除 DNA contamination (TRIzol phase separation/column)
但這玩意兒真的是貴到...= ="
: 後來去找了TRIzol的protocol來看 發現其實它本來就可以去除DNA了!!!
: 我有跑過非變性電泳~(抱歉手邊沒圖 有空之後補!!)
: 大於1kb的地方都很乾淨~~
: 其實TRIzol可以用來抽DNA DNA在分層的地方應該會被分到有機層
: 所以在分層提取的時候 如同之前文章版友的建議
: 盡量不要吸取到蛋白層的部分 犧牲多一點!!!!!
: 就可以避免掉DNA的污染了!!!
其實用 TRIzol 污染超嚴重的。
如果你有處理過原核樣品,真的是相當恐怖...
我自己的經驗是,就算 chloroform 加下去只取 300,
不轉 cDNA 直接拿 RNA sample PCR (negative control)
大概 35 cycles PCR 產物就飽和了...
(25 就看的到了)
所以我們是有處理 Turbo DNA-free
而且原核樣品還加長時間處理到 1 小時。
: 以上是我的經驗 如有錯誤 請多指教及海涵~
: 也期望其他版友能提供建議!!
: 希望有幫助到你 一起加油吧:)
: ※ 引述《cqw80000 (草履蟲)》之銘言:
: : 目前的狀況是這樣的,我們實驗室是用TRIzol抽取RNA.
: : 抽取的過程中也很順利,RNA跑完電泳後發現有genomic DNA殘留.
: : 但是因為要把RNA反轉錄成cDNA,所以目前是先取出要反轉錄的RNA的量出來.
: : 取出來後打算加入DNase I於37度C作用30分鐘後,再於65度C作用5分鐘使DNase I失活.
: : 我的問題就是在去除genomic DNA的過程中,不知道會不會使RNA降解?
: : 假如RNA會降解的話,請問前輩還有什麼方式可以去除已經萃取好的RNA中的genomic DNA.
: : 感謝!
做 real-time PCR 用跨 intron 的 primer set,
gDNA 還是會被放大,
只是不容易變成倍增狀況而已。
但是這基本上是沒有人可以給你任何的保證。
尤其是你用 sybr green 或其他 DNA binding dye (EvaGreen, LC green... etc)
如果你把 primer 跨 intron,也就是你的 primer 是由兩段 exon 組成頭尾的,
這樣狀況會稍微好點。
但是還是沒辦法保證絕對不會放大出不該放大的片段。
所以我覺得 sample preparation 要盡力到把樣品處理到只剩下 RNA。
讓你的樣本越乾淨越簡單就越好。
接著,如果是持續偵測的基因,
會建議你設計跨 intron 的 TagMan probe or pNA probe,
避免使用 DNA binding dye。
如果不是持續偵測的基因(如初篩)
則建議你除了把 primer 設計跨 intron 外,
在跑完 qPCR 後用電泳膠片確認。
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※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc)
◆ From: 140.112.218.141
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不要轉 cDNA 直接當 template PCR,
有亮就是有污染。
如果片段只有一兩百...那亮的機會實在是太大了。
其實怎麼處理都難免有殘留...
只是試著把它降到最低而已。
尤其是在 real-time 這種很靈敏的實驗。
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※ 編輯: Rarelay 來自: 140.112.218.141 (09/28 23:57)
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