Re: [求救] western
※ 引述《beavet (beavet)》之銘言:
: 請問跑電泳的時後
: 大家的電壓會一直往上升嗎?
: 我們家是用30mV的固定電流
: 但是跑的時候發現電壓會從一開始的50左右 一直往上升到200左右
: 這是常態嗎?
: 有人有過這種情形嗎?
跑電泳原理是什麼呢?陰陽離子帶電荷吧...
那你長時間的跑完電泳之後不是陰陽離子聚集在正負兩極?
那你電泳溶液不就離子分布不均衡?這樣不就電阻大?
電阻大不就容易產熱?不就熱溶膠?
因為你固定電流根據歐姆定律不就要電壓上升以維持平衡?
: 因為之前看到一個western的troubleshooting裡面有寫
: 造成fuzzy band的原因可能是high voltage
: 但是如果試圖把電壓調低
: 因為電壓會邊跑邊往上升
: 如果電壓上不去
: 電流就會降下來
: 這樣子電流不固定 結果反而不好吧?
: 那請問應該怎麼改善呢...?
跑大片膠還是小片膠?大片膠通常固定電流,小片膠通常固定電壓(沒特殊情況的話)
PSU固定電壓的話電壓怎麼會動?有把constant設定在V嗎?
如果以你的說法來看電壓電流都會動就很奇怪.
: 另外造成smeared band的可能原因是hot gel
: 請問除了在冷房跑電泳
: 還有什麼方法能夠cool down gel呢?
: 冰的runnig buffer跑一個小時也是會回到室溫的吧...
: 那還能怎麼辦呢...?
勤勞一點就換Buffer,懶一點就拿冰包住電泳槽.
: 電流應該是造成跑電泳會熱的原因吧...?
: 所以降低電流也是一個方法嗎...?
降低電流你會跑更久.
: 還有difused band的原因是Excessive protein on gel
: (可是那篇文章裡面沒有附圖
: 我不懂"difused band"跟"fuzzy band"有什麼不同...
: 感覺都是擴散開來的樣子)
difused應該是專指loading太多溢到別的lane,fuzzy是指辨識度低,毛毛糊糊揪成一團.
: 之前有看到有人問過transfer出來的membrane上
: 相鄰的band會相連成一條線 (像兩個眉毛變一字眉那樣)
: 請問這種現象就叫做"difused band"嗎?
: 因為我也會有這種連成一條的情形
: 但是我覺得原因並不是protein太多...
: 是gel沒有做好...
都是可能的原因...
但是PAGE畢竟是在溶液中進行,擴散作用是無可避免...
: 因為我protein的loading量一直是固定的
: 但有時候會連成一條有時候又不會...
: 不過我上下膠都已經讓它凝超過一小時了...
: 我不懂還有什麼原因會造成這個現象...
: 實在苦惱...唉....
: 2.transfer的問題...
: 請問大家的PVDF在transfer的前置時
: 泡完MeOH就會完全親水了嗎?
: 我們家是用3種transfer buffer的系統
: 處理PVDF的流程是:
: MeOH 30sec
活化你的PVDF,你的PVDF說明書上有說明為何要這一步驟
: ↓
: ddwater wash × 2
洗掉MeOH(畢竟你不知道MeOH會對你PAGE造成啥影響)
另外PVDF只有在濕的狀態下才會你才能transfer
: ↓
: AII buffer泡15min以上
: 我們家買的PVDF一放到MeOH裡馬上就會變成半透明的顏色沒錯
: 但是即使過了30秒 甚至1分鐘
: 用水洗過後
: 還是沒辦法親水耶...
: (就是在PVDF上滴buffer的時候 水滴不會散開 是維持一大滴的形狀)
: 這樣是不對的吧?
確定一下你拿的是PVDF嗎?
: coating沒有完全去掉 也去不掉的樣子...
: 還是大家都是這樣??
: 之後是用ECL+冷光儀照相的方式壓片
: 不知道為什麼
: membrane常常會有顏色不均勻的現象...
: 四周顏色深 中央顏色淺
有沒有把片子壓平?看起來就像是使用影印機中間沒壓下去的樣子?
在片子後面加一張白紙或是墊厚看看(穿透式掃描機的話不能用這招)
: 就是background加上上面的band 整個membrane的顏色會有漸層
: 以至於看起來一樣的loading量intensity卻不同
: 沒辦法定量...?/_\...
: (需要的話晚點補圖...)
: 請問這是什麼原因造成的....?
: transfer沒做好?
: 抗體沒hy好??
: 感謝大家有耐心的看完我的問題...
: 謝謝!!!!!
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