[求救] 蛋白純化imidazole的濃度
我的蛋白是接在pET28b帶有6-His tag
使用Ni-NTA純化蛋白
之前使用Lysis 10mM/10ml、Wash 20mM/20ml、Elution 250mM/3ml
結果每次跑膠染comassie blue出來都會有兩條bands
一條在44kD是我的目標蛋白
一條在17kD不知是啥鬼
這兩條band染色結果是差不多粗
可是做Western以Anti-His去認的話可發現17kD那條band非常非常地淡
怎麼看都不太可能是我的蛋白斷掉的片段
想請教的是...
會不會是因為我在純化的過程imidazole濃度跳太多(20mM→250mM)?
我現在想試試看改成10mM、20mM、50mM、100mM、150mM、200mM、250mM
那麼50mM、100mM、150mM、200mM這些的體積分別要加多少比較好?
謝謝!
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