[求救] 蛋白純化imidazole的濃度

看板Biotech作者 (心力交瘁........)時間16年前 (2008/03/07 20:43), 編輯推噓7(7010)
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我的蛋白是接在pET28b帶有6-His tag 使用Ni-NTA純化蛋白 之前使用Lysis 10mM/10ml、Wash 20mM/20ml、Elution 250mM/3ml 結果每次跑膠染comassie blue出來都會有兩條bands 一條在44kD是我的目標蛋白 一條在17kD不知是啥鬼 這兩條band染色結果是差不多粗 可是做Western以Anti-His去認的話可發現17kD那條band非常非常地淡 怎麼看都不太可能是我的蛋白斷掉的片段 想請教的是... 會不會是因為我在純化的過程imidazole濃度跳太多(20mM→250mM)? 我現在想試試看改成10mM、20mM、50mM、100mM、150mM、200mM、250mM 那麼50mM、100mM、150mM、200mM這些的體積分別要加多少比較好? 謝謝! -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 140.120.117.178

03/08 07:54, , 1F
有這麼不純嗎?分這麼多梯階還滿麻煩的..配藥麻煩
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03/08 07:55, , 2F
我的建議是..你用20 40 80mM做wash elution一樣250mM
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我經驗是100mM以上差不多都流光了啦..100~250這邊分梯階
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03/08 07:56, , 4F
好像有點沒意義..不過純化都是case by case..
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03/08 07:57, , 5F
你喜歡的話也可以試試..體積的話就wash的以2倍到4倍
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03/08 07:58, , 6F
column體積..elution就1倍或0.5倍column體積
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還有..假如只有這兩條band的話..其實你可以用透析膜
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直接分開他們..他們大小還算差滿多的..用透析膜分離他們
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03/08 11:59, , 9F
透析膜的分離效率並不是很好喔 通常會流過但是過很慢
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問一下..17KD的蛋白會通過一般透析模嗎?
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還是說要用孔較大的透析模呢? 謝謝唷..
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03/08 15:12, , 12F
對了想到~我的host cell Novablue也在17KD有東西..
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那一條17kDa不知道會不會是非專一性的binding
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在你的wash buffer裡 加一點NaCl 搞不好可以洗掉
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濃度可以用個150mM or 300mM 我個人是有用到500mM
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不過要看你對你的蛋白有沒有什麼影響 case by case
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03/09 10:53, , 17F
如果用AMYCON之類的東西分開勒
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文章代碼(AID): #17qJY6-d (Biotech)
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