[求救] 跑western幾個步驟上的問題

看板Biotech作者 (微笑下的真實)時間12年前 (2012/07/17 21:46), 編輯推噓1(107)
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各位板友好 幾個有關western的問題想請教 1. overnight的話 停在blocking或上一抗overnight (一樣都放在冰箱搖) 或者200mA transfer 這三種都有看過,請問比較建議停在哪一個步驟? 三者對於band會有影響嗎? 2. 上抗體後(不論一抗二抗)放在冰箱或室溫下搖對實驗會有影響嗎? 看過有的實驗室不管一抗二抗一定都放冰箱,有的卻是都放在室溫而已? 3. 我跑的檢體主要是動物組織,常常會有background 很髒,band不夠sharp 的問題有嘗試增加wash的次數,不過效果似乎有限,之前有聽朋友說過可以 延長二抗的時間,(我二抗時間一個小時,他說他是四個小時放冰箱) ,我 還沒有試過,想了很久不是很懂為什麼?至於跑出來的band常常會糊糊的不 夠sharp,有加過trypsin,但是band常常會跑掉,和原本在該出現的位置會 有一點落差,裁membrane常常會裁到有點困擾,效果似乎也還好, 想請教板友有什麼方法可以改善嗎? 我知道每間實驗室對於跑western都有自己的protocol,我想請教的是, 像transfer的時間 (400mA 2~4hr 或200mA overnight) ,上抗時間的 長短(Ex: overnight 和兩個小時)對於跑出來band好不好的影響在哪裡? 問題有點多,希望有板友能指教 謝謝 -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 114.46.149.183

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之前聽學姐說室溫下抗體binding較快 4度C binding較慢
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但比較不會有non-specific binding
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所以低溫下要放比較久 不知道是不是正確的@@
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二抗稀釋多一點background應該會少一點
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07/18 02:14, , 5F
background可能也跟用的ECL reagent 濃度有關
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07/20 04:44, , 6F
有些protocol會寫室溫一小時或4C過夜
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如果跟抗體很熟可以自由組合 若要確保好看的結果
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就一抗二抗都過夜在冰箱搖
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文章代碼(AID): #1G1MpJx5 (Biotech)
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