Re: [求救] SDS-PAGE時sample聚焦的效果很糟

看板Biotech作者 (為了更好的未來)時間16年前 (2009/08/18 23:34), 編輯推噓5(508)
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※ 引述《egoweaver (Hiko)》之銘言: : 最近在跑膠的時候一直有這個問題。查了一些資料都指向是因為buffer pH的問題,但是實 : 驗室裡其他人用同一組buffer來鑄膠卻沒有發生類似的問題,所以自己檢討一下覺得比較 : 可能出問題的有以下幾點: : 1.配膠的時候mix不均勻 : 2.為了怕上膠因為漏掉而有well塌掉所以用了配方的兩倍的APS和TEMED(希望它快點凝) : 3.完全是操作者的技術問題,大概是哪裡出包而且還沒看出來…… : 想請問以上有哪些可能會使sample不會乖乖停在上下膠交界的。 : btw,我跑膠是用65V(35min)-120V(跑到dye跳海),最近每次timer響要過去看的時候sample : 和marker都已經衝過去了…… 恩逗...sample無法聚焦我以前也有遇過... 那時候是因為跑的太久了糊掉. 也有另一個可能是跑太快(電流太高), 在stacking的部分就沒有跑好,所以後來band就會糊糊的. 另外,請問一下原po,你們load都是同樣量的蛋白質嗎? ============================================================================== 關於2. AP粉量太多好像會造成蛋白質無法分離均勻是不是? 還是我記錯了 @@ 怕上膠漏掉~我的做法是,在配的時候先把spacer填滿,滿到快要溢出來那樣, 大概等個1~3分鐘,再把comb放上去. (別等太久,不然等膠有點凝的時候再放comb,well會很難看) 或者,也可以把轉漬後的膠拿去stain,看看是不是只有全部的band都是這樣, 還是只有single band有這樣的狀況... 以上是我有遇過的狀況以及我的解決方法,如果有錯誤也歡迎各位一起討論啦 ^^a 因為我也想知道有哪些解決方法的說 ===============================以下提外話================================== 關於之前提到的組織做western,目前改善多了...(不過還有很多的進步空間 = ==) 就...sonicate久一點這樣...(疑似染色體DNA搞的鬼 == ==+) 然後RIPA的量也加多一些,去稀釋它的濃度... 總之,現在western比較能看了,不過band還是滿糊的, 要修正的還很多...唉唉唉 Q皿Q -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 140.127.227.179

08/18 23:42, , 1F
Loading的量是一致的。跑出來的band的其實是還好,可是
08/18 23:42, 1F

08/18 23:42, , 2F
以往跑的時候都會很明顯的感覺到dye在交界處停住一陣子
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08/18 23:43, , 3F
直到把電壓調大才會繼續跑,可是現在就直接衝過去,band
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08/18 23:43, , 4F
也變得比較糊了,因為電壓都是用一樣的,所以應該不是電
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流電壓的問題。
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08/19 21:12, , 6F
再跑之前你是否有坐蛋白質的定量? 確定sample沒有問題?
08/19 21:12, 6F

08/19 21:14, , 7F
以6M Urea溶樣品是OK的 因為我也跑得出來
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08/19 21:16, , 8F
如果問題是出在高鹽的話可考慮TCA/Acetone沉澱
08/19 21:16, 8F

08/19 21:41, , 9F
在urea裡不能做commassie blue的protein assay吧……所
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08/19 21:41, , 10F
以我破完菌然後denature overnight就直接跑了QQ
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09/17 00:46, , 11F
running buffer不要reuse
09/17 00:46, 11F

11/11 01:41, , 12F
流電壓的問題。 https://daxiv.com
11/11 01:41, 12F

01/03 17:00, 7年前 , 13F
Loading的量是一 http://yofuk.com
01/03 17:00, 13F
文章代碼(AID): #1AYieAmL (Biotech)
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