作者查詢 / migu0531
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migu0531 在 PTT 最新的發文, 共 3 篇
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6F→: 那elisa定量可以用我想的這方式進行嗎?有沒有需要調整01/27 10:59
7F→: 的?01/27 10:59
8F→: Western wash的時間我也有拉長,但如果是transfer的問題01/27 11:01
9F→: 話,會是什麼? 我都用i-blot快速轉漬。但如果做其他純01/27 11:01
10F→: 化的蛋白就不會有這樣一圈一圈的現象01/27 11:01
32F→: 我不是用壓片的方式~01/27 23:24
33F→: 背景有兩的問題,一個是出現一圈或是一坨的,另一個是01/27 23:26
34F→: 整張membrane背景容易黑掉01/27 23:26
35F→: https://i.imgur.com/aTedfwb.jpg01/27 23:29
36F→: 會像這圖一樣,連我的marker,和目標條帶都快跟北京融01/27 23:30
37F→: 為一體了!01/27 23:30
38F→: 背景01/27 23:30
72F→: J大說的用glycine沖提是什麼意思?01/30 20:58
81F→: 希望這討論別引起戰爭。 我相信血清對上沒有純化的蛋白01/31 12:27
82F→: ,背景會髒這件事,以前老師是這樣跟我們說。但現在實01/31 12:27
83F→: 驗室認為是我操作的問題,所以上來尋求其他方式01/31 12:27
98F→: 是用手機照相的01/31 19:22
99F→: 另外,只有在做這全蛋白的western才會有這樣的現象。其01/31 19:59
100F→: 他純化的蛋白用市售的抗體則不會這樣01/31 19:59
4F→: 有喔~已經用過HAT,再做eliss挑陽性孔01/22 21:51
3F推: IHC大部分是用50-200倍稀釋比較多。做法跟western一樣,05/04 12:22
4F→: 一抗洗完加二抗,再用DAB05/04 12:22
2F→: 前一個elution buffer是用20mM sodium phosphate, 0.5M05/01 22:31
3F→: NaCl, 500mM imidazole,pH 7.4 ,也是會沉澱05/01 22:31
5F→: 沉澱物用PBS溶不了……我的蛋白啊啊05/01 22:37
9F→: 蛋白不建議冷凍我就不清楚了! 只知道不建議反覆凍溶。05/01 23:09
10F→: 蛋白真是條不歸路……05/01 23:09
16F→: Flash freezing?應該沒有……蛋白就直接從4度丟到-20,05/02 07:17
17F→: 什麼也沒做也沒加東西05/02 07:17
18F→: 想問問大家,都用什麼方法置換buffer? 目前我有用過amic05/02 07:21
19F→: on離心加buffer順便濃縮。還有AKTA的desalting column,05/02 07:21
20F→: 但蛋白就被大量稀釋,連western都認不到,根本不知道再05/02 07:21
21F→: 哪個fraction出來……05/02 07:21
25F→: 有一個很小很小的peak,但跑膠跟western一片空白05/02 08:24
36F→: 接別人的蛋白,但留下的資料不多,只知道之前的人是用ak05/02 20:30
37F→: ta pure純化,我也照做,但還是沉澱。05/02 20:30
38F→: 另外很奇怪的事,我有配一瓶10倍的binding buffer 放4度05/02 20:38
39F→: 幾天就出現片狀的結晶沉澱…… 不知道使用的二次水有無05/02 20:38
40F→: 問題?05/02 20:38
11F推: 沒沉澱應該可以用,目前我也用過期的,拉標準曲線也還ok05/01 22:21
12F→: ~05/01 22:21
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