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作者 CSFV 在 PTT [ Biotech ] 看板的留言(推文), 共38則
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32F推: 上膠凝30分鐘左右即可05/16 00:28
33F→: 我泡整塊的native gel (TBE buffer, 5% glycerol, acrylami05/16 00:28
34F→: de/bis=29:1)不時也會出現文中所述的薄膜,解決方法是把tip05/16 00:28
35F→: 插到well最底部再load下去XD。至於SDS上膠倒是沒遇過這情況05/16 00:28
36F→: 個人覺得跟是否放過夜凝固沒有關係,但也想不出有什麼原因05/16 00:30
8F推: ebay什麼都有XD12/01 17:09
5F→: 可怕@@ 我們跟購買的廠商有簽約會定期清潔01/22 19:52
1F推: 居然!從來沒想過耶01/11 12:41
4F推: annealing溫度調低一定接得上吧?倒是可能增加非特異性結合09/15 00:33
5F→: 的機率,primer設計阿肥乍看之下沒什麼問題,硬要說的話3'09/15 00:33
6F→: 那邊可以再少一個T,點突變兩側GC比例高一些會比較好接上去09/15 00:33
7F→: 是說DpnI切O/N不會太久喔?現在幾乎都time-saving,15分鐘09/15 00:33
8F→: 就搞定,阿肥頂多給他切到一個小時,切久好像容易出事09/15 00:33
10F→: 我預設原po是不小心打錯,實際上有改XD09/15 08:00
14F推: 推insert海 暗黑大法09/09 00:05
30F推: 幾乎都有成功喔~老實說我都沒在管insert跟vector 比例,反09/09 23:21
31F→: 正就是幹你娘塞爆,硬要算的話絕對都超過10:1,每次都是塞09/09 23:21
32F→: 1.7kb的DNA進4.4kb的質體,屢試不爽,真心推薦09/09 23:21
33F推: 另外insert>2kb的話,建議recovery跟後續塗盤培養都在室溫09/09 23:27
34F→: 就好(25-30°c),溫度高的話細菌會把不喜歡的質體片段踢掉09/09 23:27
72F推: kana半衰期沒那麼短吧?我們泡完兩三個禮拜都還堪用欸,09/11 08:59
73F→: 濃度50 microgram/ml。倒是amp半衰期就很快,大概泡完超過09/11 08:59
74F→: 三天我就當作他沒加過,用之前再塗上200 microgram/ml的量09/11 08:59
75F→: 抗生素濃度太低的話,反而質體收不到刺激,複製效果會很差09/11 09:01
3F推: 珠珠load進去沒關係,會卡在well裡面,不會跑進膠裡面08/21 21:52
4F→: 之前做完IP要拿去打質譜前是這樣弄的
1F推: 如果用眼睛看不出背景有無差別的話,其實沒有必要去消耶08/07 21:33
2F→: 如果要的話,我是土法煉鋼定出每個lane的強度,丟進EXCEL08/07 21:34
3F→: 給他自己去減去08/07 21:35
4F→: 有時候太仰賴電腦定量反而會造成最後結果失真,個人經驗啦08/07 21:36
5F→: 定量結果最好還是要符合眼睛看到的,畢竟放上論文或期刊的是08/07 21:37
6F→: 膠圖本人,口委或審稿人通常還是眼見為憑08/07 21:38
4F推: 可能稍微影響純化品質吧,加入酒精目的在於移除鹽類和蛋白質06/08 20:25
5F→: 同時也帶走水分,避免核酸被水分拉走,所以才會建議濃度越高06/08 20:27
6F→: 的酒精越好,濃度不夠的話可能得到核酸量也會稍微減少。至於06/08 20:28
7F→: 是否會影響純化的核酸種類比率?阿肥這點也不太清楚06/08 20:29
8F→: 個人認為如果後續反應不會受到鹽類干擾的話,95%應急一下是06/08 20:30
9F→: 無妨啦~06/08 20:31
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