Re: [實驗] 新手流column跑液選擇和packing長度
使用TLC以及流column要有幾個觀念
1.點片不要點太大點,有時2個點靠很近你會誤認是一個點
2.在點沒有很大,TLC上顯示卻又拖尾時
要考慮一下是不是溶解度不夠好
有時化合物帶有一些官能基像COOH等會拖尾是正常的
遇到拖尾嚴重的情況可以滴一滴醋酸在溶劑系統裡試試
3.選擇溶劑系統,溶解度為優先
溶解度不夠好化合物會在流洗過程慢慢析出
會很難收到乾淨的點
接著才是控制Rf值距離
我自己習慣在0.3~0.5左右
拉低通常可以流比較乾淨,但是時間就會拉很長
如果點沒有靠很近我就會拉到0.5甚至更高都有可能
但建議剛開始不用想求快,練熟了再說
少數情況
點片雖然拉的動,但是用該溶劑比例卻拉不出來
有時是化合物需要到一定的極性才會流出來的緣故
可以加大溶劑極性看看
然後點很多個,需要每個都分出來看時
可以在流column過程中調整溶劑比例試試
通常由低極性開始,將前面的點先分開帶出來
再加大極性帶出後面的點
溶劑系統其實不單只有Ethyl acetate(EA)-Hexane(HEX)
dichloromethane(DCM)-Methanol(MeOH)也行
不過當MeOH比例到10%以上時溶出來的silica就會不少
真的要硬流就是流完再過濾一次吧..
低極性的情況,DCM-Ether、DCM-HEX、Acetone-HEX等
我也有使用過
當溶劑系統改變時,點的先後順序也會變動
一定要多點片確認一下
經驗來說,少苯環的化合物可以用ether
多苯環的化合物試試DCM
剛開始不夠熟練,可以多看paper
找跟自己做的相近的化合物,看看別人的溶劑系統
很多還會附上溶劑比例跟Rf值
做久了你就會有概念了
4.TLC不只一種固定相
一般最常用Silica gel glass plate(Normal phase)
當溶解度夠好,但是點又拉不起來時,就是化合物極性太高
可以換成使用C-18的RP-18 glass plate(Reverse phase)
不過價格貴很多
如果要用C18流column,有的實驗室會要你回收C18 gel
接著是少數的情況,化合物跟Silica親合性很好
或是卡在column上時,可以考慮用Aluminum Oxide
這算是較中性的固定相
不過因為親和性較低,容易衝太快
多加嘗試再使用
有些更專門的實驗室還會訂製特殊的gel
像做生物蛋白的,這又是另一回事了
5.Packing column前,確定gel跟溶劑系統充分攪拌均勻
確實震動column讓它緊實
當你Loading的化合物量大、極性高
dry-loading會是比較好的方式
方法是將化合物溶解,加入適量的silica gel
用減壓濃縮將solvent去除,最好再上真空盡量抽乾
(記得在緩衝瓶塞棉花,不然gel抽上去會損害pump)
殘餘的高極性溶劑都可能會影響流column
packing時盡量讓它均勻分布在gel頂端
要小心添加solvent時不要讓gel飄起
當點靠很近的時候,每根tube不要收多
有些人想少洗tube每管都收很多,收光譜才發現雜到其它點
還有TLC看不到不代表NMR看不到
必要時每一管就獨立測NMR圖
目前只想到這些,有想到再補
※ 引述《ajyy002 (Amine)》之銘言:
: 小的我不久前進到一間實驗室做專題><
: 裡面最常用的純化方法就是流column,
: 想當然爾,小嘍嘍就被叫去流column啊,
: 以前頭頭都會告訴我跑液比例,
: 所以一切都很順利
: 直到不久前頭頭試了些新反應,要我自己用TLC找極性
: 而在TLC片上常常分不太開......但是有分開,約0.3cm左右吧
: 但是在流column收產物的時候,常常會兩個點一起出來......
: 我自己覺得可能是管柱長度不夠長,
: 而我其實也不太會調整極性,常常TLC片上不是跑不上來就是分不開
: 我們實驗室最常用的跑液是hexane、EA、DCM,
: 我主要也是只會用到這三種,
: 而關於跑液調配比例和長度我的頭頭都告訴我他是靠直覺和經驗QAQ!?
: 所以請問有哪位前輩有相關經驗可以分享嗎?我真的想要學得快一點......
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人類追求公正的理性、同時也順從慾望的瘋狂
傷害則沉默的站在兩者之間,等待著..
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※ 編輯: bittywind (140.114.102.37), 03/19/2016 14:25:30
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本文引述了以下文章的的內容:
完整討論串 (本文為第 2 之 2 篇):