Re: [求救] 如何找轉錄因子

看板Biotech作者 (翼天)時間7年前 (2016/10/19 12:10), 7年前編輯推噓6(604)
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※ 引述《QuteMango (芒果是藍波萬)》之銘言: : 如果我找到一段基因 : 想要利用轉錄因子(TF)增強該基因的表現 如果你只是想增強該基因的表現, 千萬別用這種方法, 因為基本上沒有一個 TF 是只會針對單一基因作用的, 如果直接丟 TF 下去產生的副作用太多, 隨便一個教授都可以電你: 「你怎麼知道你看到的現象是從這個基因來的?  你怎麼知道這不是因為你放的 TF 去影響了其他基因?」 增強一個特定基因表現量的方法, 一般的做法是把那個基因的 ORF clone 到 expression vector 上, 用 vector 上的 promoter 去過量表現它。 : 請問該如何找到那些轉錄因子呢? : 我目前想到的做法: : 1.先找到該基因的promoter序列(如何找?) : 2.找和該promoter相似序列的其他promoter的TF,看是否有可用的 要找到控制一個基因的所有調控單元是很困難的, 雖然部分基因大概 TSS ±5 kb 的序列就有大部分的調控單元, 或是直接找該基因的 CpG island, 可是例外太多了, 調控他的 TF 還有可能座落在數十甚至數百 kb 外的 locus 上, 就算你做 4C 也不一定能找到。 網路上有很多工具可以讓你找 TF, 像是 http://alggen.lsi.upc.es/ 這個網站, 它可以幫你分析一段序列有可能會有哪些 TF binding, 可是首先他並沒有包含「所有」的 TF, 只有已知 binding motif 的 TF 能用這個方法, 並且這終究是 predition 而已, 此外一般來說多數 promoter 都會有很多共有的 TF, 像是 Sp1、Tbp 這些不太有 tissue specificity 的 TF , 如果你背景知識不夠, 很難看出這個 TF 是否就是調控你基因的重要分子。 所以這個分析其實參考價值很低, 以我來說我覺得比較有用的用途是已經知道有某個 TF 會調控, 再用這個分析去找這個 TF 可能的 motif 在哪裡。 此外, 確定是哪些 TF 之後, 還要做 luciferase assay 去驗證, 這整個過程要做的事情非常非常多! : 應該還有其他更好的方法 : 因為目前在這方面還很外行 : 所以不知道該如何搜索 : 第一次發文,如有錯誤請告知,謝謝。 總而言之, 如果你只是想增強這個基因的表現量, 一般我們都是把基因 clone 出來去過量表現, 而不會用 TF 去增強它的表現。 如果你真的很堅持, 就是要指定在 endogenous 的 gene locus 上下手, 的確是有一種方法可以達到你的需求, 就是 CRISPR/Cas9 的延伸應用: http://igtrcn.org/over-expressing-insect-genes-using-cas9/ 不過這個方法應該所費不貲, 而且也要檢查有沒有 off-target 的影響。 -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc), 來自: 120.126.39.94 ※ 文章網址: https://www.ptt.cc/bbs/Biotech/M.1476850249.A.FDA.html

10/19 15:05, , 1F
專業推
10/19 15:05, 1F

10/19 15:24, , 2F
推清楚說明;我猜原po或許不是做常見物種,所以問題不精確
10/19 15:24, 2F
對耶!我完全是預設做真核多細胞去回答的...

10/19 16:00, , 3F
專業推
10/19 16:00, 3F
※ 編輯: xxtomnyxx (120.126.39.94), 10/19/2016 16:12:15

10/20 22:22, , 4F
專業跟好心給推,但我使用http://alggen.lsi.upc.es/
10/20 22:22, 4F

10/20 22:23, , 5F
輸入了Snail這段基因(約1700bp),結果發現有72種轉錄因
10/20 22:23, 5F

10/20 22:24, , 6F
子,從1-1700都有預測的TF,請問要如何知道哪個才是真正
10/20 22:24, 6F

10/20 22:24, , 7F
會調控的因子呢?
10/20 22:24, 7F
正如我前面所說, 用這個分析來找未知的 TF 參考價值很低, 72 種可能還不包含實際上真的會去調控它的。 驗證的方法, 就是把這整段 clone 到 luciferase vector 上, 拿一個會表現 Snail 的 cell line, 把這個 vector 丟到細胞裡看 luciferase 的 activity, 確定這段 promoter 具有轉錄活性後, 在把上面可能的 motif 一個一個 delete 或 mutate 掉, 看看哪些 motif 去掉後 luciferase 的活性會顯著降低, 那麼這些 motif 可能就是調控 Snail 的重要 TF binding 的序列。 然而這是傳統的方法, 以現在研究的進展來看, 這個方法其實只有特定條件下是有用的, 現代的觀點認為基因的轉錄活性與 chromosome 3D 結構有關, 可是你 clone 到 luciferase vector 上的序列未必能完全模擬 endogenous gene locus 的 chromosome 3D 結構。 而且先決條件是你的這段序列真的就是 Snail 的 promoter, 就像我前面說的, 即使你在這 1.7 kb 上找到了重要的 TF site, 也不表示只有這個 TF 會調控 Snail, 可能在距離很遠的 locus 上也還有其他 TF 會調控 Snail。 ※ 編輯: xxtomnyxx (120.126.39.94), 10/21/2016 19:41:25

10/21 23:37, , 8F
非常感謝您詳盡的回答
10/21 23:37, 8F

10/23 16:21, , 9F
很感謝你的回答!
10/23 16:21, 9F

10/23 16:21, , 10F
並不是做少見的物種而是小鼠,很抱歉原文中沒有提到
10/23 16:21, 10F
文章代碼(AID): #1O1l99_Q (Biotech)
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