Re: [閒聊] 板上做 protein純化的版友(FPLC)

看板Biotech作者 (~四條魚~)時間14年前 (2010/05/10 12:40), 編輯推噓8(804)
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※ 引述《hellheavn (蒼天落日)》之銘言: : 不知道版上的版友有沒有人在專門摸FPLC : 或是有用過的 : 通常你們會遇到什麼樣的問題 都如何解決咧 : 或著是清洗保養有什麼見解咧 : 想說來個推文或是討論串交流一下 : 小弟不才 摸了一年還是一知半解的.... 分享一下使用經驗~ 因為我老闆曾跟我說:如果這台或這隻column壞了的話 你明天也就不用出現了...(抖) 首先建議 使用比較高階的儀器 能請專員示範教學一次是最好的 再不然至少要請使用過的在旁帶領使用 因為使用不當 不只是儀器損壞 有可能會造成人身傷害 再來 預先作好防範比之後造成問題來的好 如果有問題 就通知原廠請專員來處理吧 注意事項要看你用什麼column 一隻10萬塊的gel-filtration column的話 那就請小心謹慎並愛護的使用 如果是自己買resin來packing的小column 變慢、塞管或清潔還可以自己重packing就好 在使用時 不要爆管造成人身傷害就好= =a 我以gel-filtration column為例好了 一些要點需要注意的: 第一點、最重要的一點 "壓力" FPLC是透過幫浦加壓以推動溶液在管柱中流動 系統和column各有自己能承受的壓力限度 (說明書有寫) 所以使用時務必要注意壓力值的大小 壓力太小 溶液推不動 壓力過高會造成系統受損或管柱爆管 而FPLC大多都使用玻璃管柱 所以可想而知 爆管的話...還蠻可怕的...(抖) 之前聽專員說 有實驗室爆過 "碰"的一聲就粉碎了 還好那隻column是有外套的(外面還有一層 可恆溫的) 所以碎片沒飛出來... 現在系統應該都有安全設定 請以壓力限度最小的為設定值 以策安全 接下來其他點大多都由壓力這點延伸出來的 第二點、流速 流速越快 壓力也越大 除了爆管問題外 流速太快 長期會造成resin bed被壓縮 影響分離效果 但流速太慢 實驗也就跑越慢 老闆催data壓力也就越大... 所以自己平衡一下兩者壓力...|| 自己實驗室應該都會有規定使用的流速 所以請照規定使用 而普遍(我所能看到的...)使用的流速大概在1ml/min左右或以下 第三、雜質 顆粒性雜質是不被允許的 包括藥品不溶物、灰塵、毛屑等 造成塞管無法清除 而降低流速、分離效果 壓力上升等 因此 所有要進FPLC的溶液 包括buffer和protein 一定要過0.22 um filter 除掉雜質 如果有雜質進入 自己packing的column還可以拆掉清理一下再重新packing 但如果是整隻買來的...專員曾跟我說:我可以幫你重packing啦 但效果一定會變差... 因為原裝column在packing時有壓力設備 填裝resin時可保持整隻column密度均勻 但自己packing因重力關係 下層一定會比較密實 所以不均勻 效果會有很大的差別 送回原廠重packing?似乎沒那個服務 不然就是要白花花的銀子啦...@@a 第四、氣泡 column原則上不可以有氣泡在裡面 氣泡會使壓力提高 以及影響column的均勻度 若長期氣泡有存在 會使部份resin乾掉 就壞啦~ 所以進入FPLC的溶液要degas 免得在column中聚集出氣泡 degas有不同方法 通說還有degas專用的儀器@@a 有人也用sonication的方法 而我是用抽氣的 反正都要過濾了 所以就在抽氣過濾後 讓它多抽久一點就好 第五、蛋白質樣品 打進column的樣品越乾淨 當然column也就不會有太多髒東西卡在上面 基本的離心、過濾是一定要做的 以gel filtration為例的話 最好把gel filtration當作second column 之前可用ion-exchange或affinity column做第一次純化 分離大多細胞碎片、lipid、雜protein 再進一步純化 可保持second column乾淨 之後清潔也比較容易 還有一點 比較特殊 也比較容易被忽略 那就是蛋白質令人又愛又恨的特性 "沈澱" 特別是蛋白質有經過濃縮的 那請注意一下蛋白濃度跟buffer的成份 因為蛋白濃度太高會沈澱、buffer改變也可能使蛋白沈澱 如果跑FPLC用的buffer跟蛋白質所濃縮的buffer不同時 要稍微注意一下 是不是這樣的轉換會讓蛋白質沈澱出來 免得樣品一打進FPLC 全部沈澱卡在column裡 可就欲哭無淚了...賠了蛋白又折column... 第六、溶液 注意一下說明書 可用的藥品及濃度限制 盡量避免強酸強鹼 強氧化強還原 及高urea等條件 可降低column的損壞 另外 高鹽也要稍微注意一下 用完最好馬上清洗 不然小心鹽類結晶析出卡住管路喔~ 第七、清潔及保存 專員告訴我 如果短期(3-5天)不使用 可以用MQ水清洗保存即可 如果是長期不使用(7天以上) 最好將column用20%酒精清洗並保存 可避免微生物長出來... 當然 不同的column有各自的清洗及保存條件 所以請參照說明書喔! 保存方面記得將開口鎖好封好 免得水分揮發而有空氣進入 第八、其他 其他如使用時的設定等 就看自己的實驗性質了 但使用前也有一般該注意的五大點: UV光是否有開(或其他detector)?Fraction是否準備好?Buffer夠嗎?Protein打了嗎? Program設定對嗎? 第九、問題解決 分享兩個 1.一隻column使用久了 因為液體流動跟重力的關係 下面的resin一定會越來越密 這時怎麼辦? 我老闆說 可以把column整隻倒過來跑...均衡一下... 這是他之前實驗室的方法...這我沒試過... 2.如果發現管路有空氣跑進column中的話怎麼辦? 說明書應該有寫。我們家的那隻它寫說...整隻倒過來跑 把空氣推出... 試過 有用 但不見得全部推的出來就是了... 所以如果看到有空氣 能的話趕快把機器停下 把空氣排掉再繼續吧 我家也只是一台小低階的FPLC 目前能想到的大概就這些了~ 希望對大家能有幫助 祝實驗順利~!! -- 我不是業務專員 -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 140.116.94.157 ※ 編輯: Fourfish 來自: 140.116.94.157 (05/10 12:42)

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PUSH
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我們家以前也只有一台akta prime
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對面家則是三級都有,整套的XD
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推 我家的也是基本款prime
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不過我覺得20%的酒精到底能夠撐多久?
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個人經驗如果灌20%EtOH前洗得夠乾淨,大約半年沒問題
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05/10 22:00, , 7F
因為我最長也只有隔了半年沒用而已......
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05/10 23:24, , 8F
<(_ _)> 觀念釐清了不少 推一個
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05/11 08:28, , 9F
我們lab老闆要求是最好兩周洗一次 不過..XD
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因為20%EtOH也是過濾過的 也去掉了大部分孢子 所以只要封
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好不讓EtOH揮發掉 長時間也沒問題 甚至可以放4度保存更久
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根據標準是一個月要用1N的NaOH洗一次
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文章代碼(AID): #1Bvuullp (Biotech)
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