[求救] 冷凍切片破洞和H&E stain的ㄧ些問題

看板Biotech作者 (奇犽)時間16年前 (2009/07/22 23:32), 編輯推噓0(0032)
留言32則, 5人參與, 7年前最新討論串1/3 (看更多)
其實還蠻多問題的,做了兩個多月,這有ㄧ些問題ㄧ直不時的出現... 在問問題前我先把我大致的實驗流程解釋ㄧ下 首先我要看的是小鼠的腫瘤和非腫瘤在小鼠的肝臟中表現的差異 我們的小鼠是帶有EGFP這個transgene的小鼠會表現在liver當中 流程如下 sacrifice 小鼠取出liver ↓ 4% PFA fix ↓ PBS wash ↓ sucrose脫水(6%,2hr→12%,2hr→18%,2hr→24%,2hr→30%,overnight) ↓ OCT包埋 ↓ -20度冷凍切片(6um) by 切片機 ↓ (儲藏在-30度) ↓ 用90% glycerol+10% PBS, mount cover slide,用螢光顯微鏡看tissue螢光表現 ↓ 用PBS洗掉cover slide,再H&E stain ↓ Hematoxylin ↓ 1% HCl in 70% ETOH (acid alcohol), dip several times ↓ ammonia, dip several times ↓ Eosin ↓ 脫水(70% ETOH→90% ETOH→100% ETOH→Xylene→封片) 結果發生了幾個問題 問題1:我的H&E stain後,tissue經常會有破洞,破成網狀..(如果有需要我可以附圖) 問題2:H&E stain後會有非細胞核的區域出現Hematoxylin染上的小點點,有時候還蠻多的 問題3:H&E stain的顏色我ㄧ直抓不到一個固定的condition來固定顏色表現,常常 會太紅或太紫,有時後染顏色的就不錯很能區分核和質 另外,有的時候Hematoxylin染色會有帶狀的情形發生,顏色分不不均勻, 我染色都適用染缸,所以理論上上色應該要均勻,除非tissue厚薄不ㄧ(有可能嗎)? 問題4:在染色前我會用90% glycerol+10% PBS, mount cover slide然後看螢光表現, 有時後細胞的morphology會變得怪怪的,細胞邊緣不是那麼明顯 問題5:另外我想問ㄧ下,ㄧ般OCT放冰箱可以放多久?切好的tissue已mount在slide 上的玻片可以放多久?放幾度? 另外要如何避免開關冰箱對凍切的tissue產生冷凍、解凍的傷害? 不知道有沒有人有類似的問題,最近真的碰到瓶頸,無助>"< 有人可以幫我解答嗎>"< 先謝謝各位了m(_"_)m -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 118.168.135.149

07/22 23:36, , 1F
我是覺得可能是沒有固定好耶,請問你fix的condition跟時間?
07/22 23:36, 1F

07/23 01:31, , 2F
1.切片機的刀片是否磨損要更換
07/23 01:31, 2F

07/23 01:32, , 3F
2.fit時避免氣泡進入
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07/23 01:33, , 4F
3.洗掉cover slide時 組織是否會被傷到
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07/23 09:26, , 5F
我fix是用4%PFA,30min,4度
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07/23 09:27, , 6F
切片刀我大概沏兩三個OCT後就會換新
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07/23 09:29, , 7F
schmitt大說的沒錯,洗掉cover slide時組織確實很容易
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07/23 09:29, , 8F
弄傷,所以後來我染色和看螢光分不同片,不過偶爾還是
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07/23 09:29, , 9F
會出現以上的情形>"<
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07/23 11:58, , 10F
為什麼你需要用到HCL??
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07/23 12:43, , 11F
網路上找到的protocol,acid alcohol可以退染hematoxyli
07/23 12:43, 11F

07/23 12:44, , 12F
我覺得退染過的,eosin比較容易上色..
07/23 12:44, 12F

07/23 13:16, , 13F
通常冷凍切片用OCT包埋者無須固定和脫水,Hematoxlin
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07/23 13:18, , 14F
用水退染即可(抓好時間就好)因HCL是強酸,應該不適合
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07/23 13:19, , 15F
用水退染就好(抓好時間就好),HCL是強酸,應該不適合
07/23 13:19, 15F

07/23 13:21, , 16F
相同的eosin也是抓好時間就OK,你似乎多了太多的步驟~
07/23 13:21, 16F

07/23 13:23, , 17F
以上你可以操考看看~
07/23 13:23, 17F

07/23 13:24, , 18F
sorry! key錯字~ 以上你可以參考看看~ ^^
07/23 13:24, 18F

07/23 20:42, , 19F
目前我看過以及使用過的方式,固定時間都遠超過30分鐘喔
07/23 20:42, 19F

07/23 20:43, , 20F
如果你在染HE之前就看不到細胞的外型 可能要考慮換別的固定
07/23 20:43, 20F

07/23 20:44, , 21F
方式 或者將你的組織切的更小塊 改善固定的效率
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07/23 20:45, , 22F
當然 破碎的細胞也常常是因為切片過程沒處理好所導致
07/23 20:45, 22F

07/23 21:03, , 23F
忘了說 30min內的固定時間通常是出現在固定cultured cell
07/23 21:03, 23F

07/24 00:33, , 24F
starssea2009說的沒錯
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07/24 00:36, , 25F
熊熊想到請注意退染時間會引想到太紅或太紫
07/24 00:36, 25F

07/24 12:50, , 26F
關於固定的時間,其實我也不知道我要用多久..
07/24 12:50, 26F

07/24 12:51, , 27F
我是用後固定,liver 切片後在泡在4%PFA當中,因為我的
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07/24 12:52, , 28F
tissue還蠻小的(平常OCT block可以放兩到三片),所以說
07/24 12:52, 28F

07/24 12:54, , 29F
我怕放太久會有別的effect出現,因為fix時間和tissue大
07/24 12:54, 29F

07/24 12:55, , 30F
小有關,所以我是不是要test一下fixation的時間?
07/24 12:55, 30F

11/11 01:37, , 31F
用水退染就好(抓好時間 https://noxiv.com
11/11 01:37, 31F

01/03 16:58, 7年前 , 32F
我是覺得可能是沒有固定 https://noxiv.com
01/03 16:58, 32F
文章代碼(AID): #1APp48ur (Biotech)
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