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作者 mattmatt 在 PTT [ Biotech ] 看板的留言(推文), 共275則
限定看板:Biotech
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5F推:跑一塊native PAGE和SDS PAGE 看western能不能測到his01/23 04:30
6F→:我的case 100mM imidazole就會洗下來 200mM以上洗光光01/23 04:32
7F→:buffer是用Tris-Cl和NaH2PO4 pH8 感覺buffer影響較小01/23 04:33
8F→:可能還要測一下Ni-NTA agarose binding後flow過去的extra01/23 04:35
12F推:視抗生素的作用和何種菌 還有titer 每一種菌(細菌/真菌)01/22 18:43
13F→:能耐受的抗生素種類不同 劑量也不同01/22 18:43
14F→:要是對菌沒作用的話 stock的濃度也殺不死01/22 18:44
15F→:所以才有所謂超級細菌 萬古黴素都殺不死的那種...01/22 18:45
3F推:當然不會找到具有gap的結果...因為你用的是BLAST01/22 02:01
4F→:BLAST:Basic "Local Alignment" Search Tool01/22 02:02
5F→:他只做local alignment搜尋 並不會加gap進去找01/22 02:03
6F→:你講的下面加入gap的 叫做global alignmnet01/22 02:04
7F→:兩個是不同的方法 結果呈現和運算速度都有差01/22 02:04
8F推:就像你說的 local只針對相同或相似的片段做搜尋01/22 02:10
9F→:global則是會加入gap使序列長度一至後再尋找可能的排列01/22 02:10
10F→:global通常用在multiple sequence alignment 以多條序列01/22 02:11
11F→:的資訊組合出最有可能的排列方式01/22 02:12
12F→:但NCBI資料庫序列有幾千萬條 還要應付全世界的人的使用01/22 02:13
13F→:若是用一條序列要求global的方法 幾台超級電腦都不夠算01/22 02:13
1F推:RT反應完後cDNA有稀釋過嗎? 有些RT buffer會抑制PCR反應01/13 16:55
2F→:另外DNase處理完的RNA直接上機可以跑?!?!?!01/13 16:55
3F→:要嘛就是DNA殘留...要嘛就是你們家酵素相當厲害...01/13 16:56
4F→:最後..不知你們的設計為何需要絕對定量..一般看基因表現01/13 16:58
5F→:大多使用house keeping gene去做相對定量..01/13 16:58
6F→:印象中mRNA要做絕對定量來計算轉錄量還滿不容易的...01/13 17:00
1F推:calcofluor white Excitation 365-440 Emission 435-52001/11 10:27
2F→:不知道你的calcoflour是買哪一種 但激發和散出很接近01/11 10:28
3F→:不用濾鏡(顯微鏡) 散出光 容易被其他波長蓋掉01/11 10:31
4F推:況且藍紫光較其他顏色弱 可見光會蓋過 一般相機拍不起來01/11 10:34
5F→:陽春一點就是幫相機買率鏡 留下435-520的波長 也許可以拍01/11 10:35
6F→:看你買的calcofluor適合哪個波長的濾鏡01/11 10:36
4F推:拿吸滿水的一疊擦手紙蓋在上面吧...一直加水到泡軟為止01/01 03:36
1F推:1.兩者放相同量的DNA下去各別的kit內 按照建議設定12/31 04:16
2F→:比較cp 沒差很多的話就沒甚麼問題 相對定量的話影響不大12/31 04:17
3F→:2.目測同樣大小的band很難說是相同序列 序列的不同也會讓12/31 04:20
4F→:Tm值有差..有可能P到base差幾個的片段 single copy gene?12/31 04:22
5F→:有沒有不同alle的可能? 或者用3%的agarose去試著跑開看看12/31 04:24
6F→:3.端看你的產物大小和GC% 沒有絕對值 peak溫度越集中越好12/31 04:26
7F→:4.膠膜問題多多,表面多少不太平整 還是tube比較穩定一點12/31 04:28
1F推:transfomation&表現系統完整的話應該OK 做了就知道!12/31 04:38
2F→:但GUS好像比較便宜?12/31 04:38
16F推:請問V:I是體積比 重量比 還是莫耳數比?12/27 23:19
17F→:另外請問ligation total體積? 使用的切位是甚麼酵素?12/27 23:19
27F推:用體積比計算是錯誤的 要用莫耳數比12/28 22:58
28F→:按照你vector和insert的大小 V:I要1:3的話12/28 22:58
29F→:vector建議150~200ng insert大概100~150ng或更多12/28 22:59
30F→:將以"純水"回溶的純化過的vector與insert加入tube後12/28 23:00
31F→:65度五分鐘 spin down然後馬上放冰上 再加入buffer ATP12/28 23:01
32F→:與ligase, total體積不超過20ul(建議10ul)12/28 23:02
33F→:依你的切位 放在12度C以下會比較好 over night ligation12/28 23:03
34F→:ligation完後加入competent cell 混勻後冰上30~45min12/28 23:05
35F→:雖然是commercial的 還是建議做一下heat shock...12/28 23:06
36F→:42度90秒 (commercial應該30秒即可) 然後冰上5min12/28 23:07
37F→:然後加入1ml LB,37度搖晃(250rpm)培養1hr..12/28 23:08
38F→:養完後用8000rpm離心5min 去除上層medium 留100ul LB12/28 23:09
39F→:懸浮後塗盤 (commercial的 LB可以只養30min)12/28 23:10
2F推:10ul影響不大 相對定量的話沒甚麼關係12/26 15:32