[求救] PCR 問題

看板Biotech作者 (草蓆)時間12年前 (2012/02/21 18:23), 編輯推噓5(5012)
留言17則, 6人參與, 最新討論串1/1
【問題】: 如何找出PRIMER與template的condition 【問題起因】: 現在我有一組sample做為control,在這組control理論上是不會被primer 黏上,也就是應該 "不會有BAND" 出現 但跑出來結果有BAND產生,所以現在想法在於condition問題 以下這想法不確定正不正確 "只要condition合適,不論primer與template是不是在序列上有沒有match 有可能有"一定機率"做出產物" 也就是比如anneling溫度極低,使某CYCLE PCR不小心黏上做出東西 那麼這樣的錯誤就會被放大 (也就是該錯誤變成template,然後做出產物) 基於這樣的想法 (不確定這想法對不對) 要求證,想透過是否有軟體能計算 primer跟template在怎樣的條件下會match並做出primer 我有試過用mac vector,但似乎只會跟你講說 這primer不會match之類 (也有可能我操作不熟,或有我不知的方法) 而我要求的是在怎樣他們才會match,不論條件多極端 【個人看法】: 主要因為我實驗的PCR是在非常低的anneling溫度,想知道這樣條件是否就是問題 而同組control不同次的實驗 (一樣sample一樣condition,差別只在先後) 卻有不同的結果。 再盡力避免人為失誤之下,考慮是污染被放大的情況 也就是不正常環境下的match 感謝各位 -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 140.120.130.105

02/21 18:26, , 1F
先用水當control確定沒污染再說。
02/21 18:26, 1F
有試過 我是這樣配置 1.negative controll(不應該有band) ----> dna+ez+.... --> pcr 2. ----> dna+water ---> pcr 3. -----> water 前兩組用的DNA一樣,都是不應該被PRIMER黏上的TEMPLATE 結果是有加enzyne的,做完pcr 有band -------> 不應該有 沒加enzyme是完全沒東西 -------> 正常 所以感覺就是primer不知為啥會黏出東西 可能是tm值問題 但tm值目前是不可能變動,不然實驗組也弄不出來 control條件又需和實驗組一樣,不然不叫control組 所以才想知道有無辦法知啥情況下,本應不該黏上的卻可以黏上 這樣就可以把control去掉 ※ 編輯: travelmat 來自: 59.126.67.149 (02/22 11:34)

02/22 13:32, , 2F

02/22 13:32, , 3F
pcr原理自己複習一下吧 有聽過non-specific binding嗎
02/22 13:32, 3F
所以我才想要知道在怎樣的條件下 才會產生這種不該BIND卻BIND上去,而做出產物的情況 我想知道那個CONDITION,比如TM值,或是其他東西 (而我希望有軟體或是更精準的實驗方法告訴我 因為目前為止,同樣的sample同樣的condition卻會出現前一次有東西後一次沒東西 表示非常不穩定,所以我沒辦法藉由比如 45c --> 沒band 44c --> 有band 43c --> 有band 來推測 44度c或許是該值 ps:現在實驗情況是 比如 45c ----> 第一次 沒band ------>第2次 有band ------> ..... 44c ----> 第一次 沒band ------>第2次 有band ------> ..... 43c ----> 第一次 沒band ------>第2次 有band ------> ..... ..... ... .. 而實驗組condition剛好落在中間 以目前比較合理的猜測即是TM值太低 加上PRIMER專一性低 即是Ia大講的部份 所以我才想要找出那個值,或是該問題 ※ 編輯: travelmat 來自: 59.126.67.149 (02/22 17:07) 補充一下 我的想法是這樣 今天比較合理的假設就是不專一 (TM值太低;PRIMER專一性不夠;....等等) 但我要先有東西證明 的確今天是因為這樣問題才會有BAND 而不是其他我沒注意 或是我沒辦法排除的因素造成這個東西出現 這樣我才有辦法在實驗中把這項污染去掉 感謝 ※ 編輯: travelmat 來自: 59.126.67.149 (02/22 17:11)

02/22 20:17, , 4F
為什麼沒有water當template的control...................
02/22 20:17, 4F
上面有提到 有單只跑 DNA+水 跟 單只 水 這兩組 而這兩組都沒事

02/22 22:07, , 5F
先確定是不是汙染吧 之前發生過pipetman汙染怎麼P都有band
02/22 22:07, 5F
我同一次操作 一次做兩組 (同樣東西) 分兩次pcr 同台機器,而且聽從同學意見,連pcr機裡放的well都一樣 前次跟後次就是不一樣

02/22 22:09, , 6F
template來源是否乾淨? 再者慢慢提高Ta就可以找到條件
02/22 22:09, 6F

02/22 22:12, , 7F
如果是pepetman汙染通常還會交叉汙染 連你的sample也會汙染
02/22 22:12, 7F

02/22 22:13, , 8F
汙染源通常是 吸過高濃度的目標基因 例如plasmid
02/22 22:13, 8F

02/22 23:52, , 9F
使用的PCR機器是不是同一台?
02/22 23:52, 9F
如果是ez buff dna water .... 等等汙染的話 應該沒道理 同樣實驗同樣操作 前次有汙染,後面卻沒汙染 ※ 編輯: travelmat 來自: 114.33.54.112 (02/23 00:04) 感謝上面各位大大 幫我想辦法 小弟在這邊先謝過 萬分感謝 ※ 編輯: travelmat 來自: 114.33.54.112 (02/23 00:07)

02/23 09:09, , 10F
那個水control的意思應該是要水+primer set+enzyme吧...
02/23 09:09, 10F

02/23 09:10, , 11F
用non-targeted DNA做NC太容易有意外。
02/23 09:10, 11F
做這目的應該是 1.汙染來自dna ---->則用水取代dna時 就不會有band出現 (當然前題是我要先確定此dna跟PRIMER的確是不MATCH的,同時還需 另一組乾淨dna做check) 2.汙染來自水 ----> 則用水取代dna 卻還是有band出現 我上面有提到我有做一組 dna+水 下去跑pcr當control ------> 沒band出現 所以有可能為: 1.水跟dna沒汙染 2.或是有污染但因為沒ez,primer...等等把他放大 接著看我平常實驗的CONTROL dna+water+ez+primer.....等等 卻會有前次有污染,後次卻沒汙染的情況 所以會變成為 1.如果是 這些內容有污染,在每次都有混勻的情況下取樣,應該結果都是一樣 要馬都污染,要馬都沒污染 (我知道如果直接跑一管以水取代DNA,仍加PRINER,EZ會比較直觀 但就現有資訊應該也可以得證 ?)

02/23 11:49, , 12F
我覺得是sample交叉污染 給其他人做幾次看看
02/23 11:49, 12F
交叉污染的意思是比如a管dna污染到b管dna嗎? 可現在CONTROL組跑出的BAND大小跟實驗組不太一樣 差了約200bp 而且主要在於汙染應該是不可逆的 也就是污染了就污染了 (除非他degray) 這樣就無法解釋 為甚麼同樣實驗 多次實驗下來 前後結果會不一樣 另外想請問HEK大大 你提到 "用non-targeted DNA做NC太容易有意外。" 因為小弟實驗目前是這樣 有組DNA叫 RV 我將這DNA拿去做bisuilfite處理 (DNA序列上的 C會轉變為T (U), 但如果這C上有被甲基化,則依然保持C) 暫稱 RV(B) 因應序列前後的改變 ( RV----->RV(B) ) 我設計了一組 "序列改變後"的primer 也就是理論上他只會和 bisulfite處理過後的DNA進行binding RV(B) 此時我設計了兩組control pos+ control: 利用另外一組PCR primer從RV上P出一段DNA 因應PCR product "不會" 有甲基化的情況 因此把這段P出來的DNA進行bisulfite處理 則此DNA序列上的C 必然 會轉變為 T(U) (此處排除轉變不完全因素,有別組control來排除這因素) (PS 這邊使用的PRIMER和實驗組 primer不同,這邊的primer match的是 非bisulfite的序列,單純用來做出一段沒有甲基化,且包括我感興趣片段的 DNA片段) 所以利用這組當POS control 也就是假設我的實驗組中 的確有這片段,同時處理bisulfite成功,則band size應該會和 +control一樣 (確認DNA中是否有這片段還有另一步驟duoble check bisulfite處理成功 也還有另一步驟duoble check) NEG- control: 拿原始RV DNA做為control 也就是處理bisulfite使他序列改變"前"的DNA 因應primer設計是以 "處理過後" 的DNA序列 = RV(B) 因此RV理論上是不可能被binding 目前我是這樣設計的 但HEK大大提到的我剛剛有想了一下 的確non-target negative control有很多問題 我自己想到的有這些 1.沒BAND不一定就等於 他不會bind 2.-control 有BAND也不代表 實驗組的BAND是錯的 想請問HEK大大有沒有比較好的方法可以提供給小弟 萬分感謝 也非常謝謝其他大大 真的非常感謝 ※ 編輯: travelmat 來自: 140.120.130.105 (02/23 13:44)

02/23 13:06, , 13F
推HEK293,水control請加enzyme先試試,再去考慮其他
02/23 13:06, 13F
※ 編輯: travelmat 來自: 140.120.130.105 (02/23 13:47) ※ 編輯: travelmat 來自: 140.120.130.105 (02/23 13:54)

02/23 23:39, , 14F
考慮很仔細很棒,但是既然在troubleshooting,應該以排除
02/23 23:39, 14F

02/23 23:40, , 15F
為先。當然如果這是你的研究主題,那無妨。
02/23 23:40, 15F

02/23 23:41, , 16F
non-targeted control就像scramble RNAi一樣很難設計,
02/23 23:41, 16F

02/23 23:42, , 17F
更何況你的理論neg cont.序列相似度頗高+Tm低。
02/23 23:42, 17F
謝謝樓上各位 我決定重頭再一次把SMAPLE ,水...等等全部check一次 (其實已經check過兩次了= =) 先排除污染 如果不行的話接著在考慮 non-target control 這部份 @ace大 很不幸的這步只是我實驗的第二步.... 後面還有更麻煩的>"< 當初有考量到兩段序列 (即處理前跟處理後的序列) 非常相近 即使bind的位置有特別選過,但又加上tm值問題 會出現這情況似乎也是可預期的 但目前實在想不到其他方法可以替代 加上自己實驗室跟周圍實驗室沒人用類似方法做此類實驗 無從問起 paper在這部份又會忽略 加上現在paper都用kit做這種實驗= = 所以只能自己一步一步try 真的非常感謝各位大大 祝各位實驗順利 :) ※ 編輯: travelmat 來自: 114.33.54.112 (02/25 10:50)
文章代碼(AID): #1FGt2Uho (Biotech)