超節省 繼代細胞法

看板Biotech作者 (珍)時間15年前 (2010/07/26 17:52), 編輯推噓8(8019)
留言27則, 14人參與, 最新討論串1/1
剛開始學養細胞時 進階舉辦了一場有關細胞培養的演講 講師是食研所的負責人 他說 食研所負責這麼多種的細胞培養 他們繼代時從不離心 因為離心傷細胞 那這樣子要怎麼passage呢? 我發展了一套超節省超環保的繼代細胞法 過程中只需要用2支無菌dropper 完全不需用到塑膠pipette 但前提是 須將細胞養在10cm dish中 以我的MRC-5 cell為例 1. 一開始解凍細胞時須以37℃快速解凍後,就直接將細胞加入10cm dish中, medium約10mL,不需離心,隔天等細胞貼上後換medium就好 換medium時直接把上蓋打開把medium倒到廢液桶就好,再用dropper吸約7mL medium到dish中。 大部分的細胞 (像我的MRC-5) 是不太會受低濃度的DMSO影響的,只有少部分細胞 很敏感才需要以離心把DMSO去掉,例如 MDCK cell。而直接把上蓋打開把medium 倒到這種豪氣的作法是要勇氣的,要一氣呵成 (其實就跟配meduim一樣,大家不 都是把DMEM跟MEM直接倒出來到flask中) 本人從沒有污染過,同事看我這樣也很 傻眼沒人跟進,但是這樣就直接省下了1支塑膠pipette,吸medium時我都是用 dropper,只是要吸很多次而已,除非是在分細胞到很多well中才會用到比較方便 的pipette。成本來說無菌dropper約3元/支,5mL pipette約4.2元/支, 10mL pipette約4.5元/支。 2. 繼代細胞時,一開始也是直接把medium倒掉後,用dropper1吸約2.5~3mL PBS 輕輕滴到細胞上 (此時把dropper1要留著倒放在架子上,不要碰到別的東西就好, 通常我們都用50mL離心管所附的保麗龍),以PBS wash細胞後直接倒掉,再用 dropper1吸1mL T/E到dish (因為T/E本來就是溶在PBS中,所以不衝突) , dropper1一樣要留著,接下來就是放到37℃作用。這一步是關鍵步驟,每個細胞 作用時間不一樣,開始時要test作用時間,要找到細胞要掉不掉的時間,像我 MRC-5作用4min會全掉下來,但作用2.5min時不拍它,它還是暫時不會飄起來, 為什麼要這樣子?因為作用到2.5min時就用dropper1把T/E吸掉 (dropper1要 繼續留著),此時細胞還在disk上。用dropper2吸約2mL medium到dish中 (dropper2要留著),再用dropper1 pipetting細胞看要分幾分幾,再用dropper2 補足medium。 整個過程只需用到2支dropper,省下了離心管和無數支pipette,我相信大部分的人 每一個步驟都用掉一支pipette,整個過程下來4~5支pipette外加一支離心管跑不掉, 因為很過程麻煩,大家又怕污染,所以不好推動,給大家參考囉! -- ※ 發信站: 批踢踢實業坊(ptt.cc) ◆ From: 140.112.125.206

07/26 17:54, , 1F
1.解凍細胞本來就case by case....
07/26 17:54, 1F

07/26 17:55, , 2F
另外dropper要怎樣定吸多少? 上面又沒刻度
07/26 17:55, 2F

07/26 18:03, , 3F
用倒的 容易邊邊留下液體 到時候污染不就...
07/26 18:03, 3F

07/26 18:06, , 4F
我少量時候都只用tip 更省 - -"
07/26 18:06, 4F

07/26 18:12, , 5F
不過大量的話我也用 dropper 上面有刻度阿:D 最大是3mL
07/26 18:12, 5F

07/26 18:20, , 6F
用suction加上玻璃滴管加上酒精不就所有移除medium的動作
07/26 18:20, 6F

07/26 18:20, , 7F
都能做.....
07/26 18:20, 7F

07/26 18:22, , 8F
其實重點在計算哪些動作可以共用哪些不能,一氣呵成最重要
07/26 18:22, 8F

07/26 18:22, , 9F
同樓上接suction就好 PBS*1 Trypsin*1 Medium*1
07/26 18:22, 9F

07/26 18:22, , 10F
總共3 1000uL tip就可以完成 dropper還可以超音波
07/26 18:22, 10F

07/26 18:23, , 11F
滅菌後烘乾再使用..不過省這沒意思
07/26 18:23, 11F

07/26 18:30, , 12F
繼代我連T/E都沒去除 直接用medium稀釋掉
07/26 18:30, 12F

07/26 18:57, , 13F
我也是繼代直接當作血清中和TE 不另外離心
07/26 18:57, 13F

07/26 20:46, , 14F
反正是老闆出錢...看在被奴役的份上..我都選最浪費的方法
07/26 20:46, 14F

07/26 20:49, , 15F
省時..不汙染...比省錢更重要...
07/26 20:49, 15F

07/27 11:13, , 16F
平常繼代應該不用離心吧
07/27 11:13, 16F

07/27 13:01, , 17F
用倒的邊邊留下液體 用酒精棉擦掉就好了
07/27 13:01, 17F

07/27 13:04, , 18F
另外 用倒的真的很容易污染 我medium分裝都慢慢吸
07/27 13:04, 18F

07/27 15:48, , 19F
不污染比較重要....
07/27 15:48, 19F

07/27 18:04, , 20F
其實做法很多都可以 我訴求一向是能省一支tip就是環保囉!
07/27 18:04, 20F

07/28 21:30, , 21F
總覺得...有點野人獻曝的味道?
07/28 21:30, 21F

07/29 00:13, , 22F
你可以用玻璃pippet...最環保
07/29 00:13, 22F

07/30 22:35, , 23F
玻璃pippet +1 最環保不就用這個嗎?
07/30 22:35, 23F

07/30 23:07, , 24F
在醫院作實驗很多沒有回收使用器材的設備
07/30 23:07, 24F

08/04 19:22, , 25F
我繼代培養都是一根pippet + 2~3根1000uL Tip
08/04 19:22, 25F

08/04 19:23, , 26F
除了medium~其他都是用tip吸取~自己認為很省了XD
08/04 19:23, 26F

08/04 19:24, , 27F
但是Trypsin和PBS都是50ml tube分裝~至少沒污染過
08/04 19:24, 27F
文章代碼(AID): #1CJLhLzJ (Biotech)